Revista de Odontologia da UNESP
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Original Article

Atividade antifúngica dos extratos glicólicos de Rosmarinus officinalis Linn. e Syzygium cumini Linn. sobre cepas clínicas de Candida albicans, Candida glabrata e Candida tropicalis

Antifungal activity of glycolics extracts of Rosmarinus officinalis Linn. and Syzygium cumini Linn. on clinical strains of Candida albicans, Candida glabrata and Candida tropicalis

Costa, A.C.B.P.; Pereira, C.A.; Freire, F.; Junqueira, J.C.; Jorge, A.O.C.

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Resumo

O objetivo deste estudo consiste em avaliar in vitro o potencial antifúngico dos extratos glicólicos de Rosmarinus officinalis Linn. (alecrim) e Syzygium cumini Linn. (jambolão) sobre cepas clínicas de Candida albicans (n = 14), Candida glabrata (n = 8) e Candida tropicalis (n = 8). A Concentração Inibitória Mínima (CIM) foi determinada por meio de diluições seriadas dos extratos (100 a 3,125 mg.mL–1) em caldo Sabouraud, que foram posteriormente inoculados com suspensões fúngicas (106 células.mL–1). Estes ensaios permaneceram incubados a 37 °C, por 24 horas. Após o período de incubação, os ensaios que não apresentaram crescimento no caldo foram semeados em ágar Sabouraud e incubados a 37 °C por 48 horas, para determinar a Concentração Fungicida Mínima (CFM). Para a maioria das cepas estudadas, a CIM do extrato de Rosmarinus officinalis Linn. foi similar ao extrato de Syzygium cumini Linn., correspondendo a 25 mg.mL–1 para C. albicans, 25 mg.mL–1 para C. glabrata e 12,5 mg.mL–1 para C. tropicalis. Os valores de CFM dos extratos de Rosmarinus officinalis Linn. e Syzygium cumini Linn. foram, respectivamente, 25 e 50 mg. mL–1 para C. albicans, 50 mg.mL–1 para C. glabrata e 25 mg.mL–1 para C. tropicalis. Conclui-se que os extratos glicólicos de Rosmarinus officinalis Linn. e Syzygium cumini Linn. apresentaram potencial antifúngico para todas as cepas de Candida estudadas, sendo que as cepas de C. tropicalis demonstraram-se mais sensíveis aos extratos em relação a C. albicans e C. glabrata.

Palavras-chave

Candida albicans, Candida tropicalis, Candida glabrata, Rosmarinus officinalis, Syzygium cumini

Abstract

The aim of this study was to evaluate in vitro antifungal potential of extracts glycolics Rosmarinus officinalis Linn. (rosemary) and Syzygium cumini Linn. (jambolan) on clinical strains of Candida albicans (n = 14), Candida tropicalis (n = 8) and Candida glabrata (n = 8). The minimal inhibitory concentration (MIC) was determined by serial dilution of the extracts (100 to 3125 mg.mL-¹) in Sabouraud broth, which were then inoculated with fungical suspensions (106 cells.mL-¹) and incubated at 37 °C / 24 hours. After the incubation period, the assays of the previous test which showed no growth in broth were planted in Sabouraud agar and incubated at 37 °C / 48 hours to determine the Minimal Fungicidal Concentration (MFC). For most strains studied, the MIC of the extract of Rosmarinus officinalis Linn. was similar to the extract of Syzygium cumini Linn., corresponding to 25 mg.mL-¹ for C. albicans, 25 mg.mL-¹ for C. glabrata and 12.5 mg.mL-¹ for C. tropicalis. The MFC of extract of Rosmarinus officinalis Linn. and Syzygium cumini Linn. was, respectively, 25 and 50 mg.mL-¹ for C. albicans, 50 mg.mL-¹ for C. glabrata and 25 mg.mL-¹ for C. tropicalis. It concluded that the extracts of glycolics Rosmarinus officinalis Linn. and Syzygium cumini Linn. showed potential antifungal for all strains of Candida studied, and the strains of C. tropicalis shown to be more sensitive to extracts in relation to C. albicans and C. glabrata.

Keywords

Candida albicans, Candida tropicalis, Candida glabrata, Rosmarinus officinalis, Syzygium cumini

References



1. De Repentigny L, Aumont F, Bernard K, Belhumeur P. Characterization of binding of Candida albicans to small intestinal mucin and its role in adherence to mucosal epithelial cells. Infect Immun. 2000;68:3172-9.

2. Leung WK, Dassanayake RS, Yau JYY, Jin LJ, Yam WC, Samaranayake LP. Oral colonization, phenotypic, and genotypic profiles of Candida species in irradiated, dentate, xerostomic nasopharyngeal carcinoma survivors. J Clin Microbiol. 2000;38:2219-26.

3. Sundqvist G, Figdor D, Persson S, Sjogren U. Microbiologic analysis of teeth with failed endodontic treatment and the outcome of conservative re-treatment. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 1998;85:86-93.

4. Sant’ Ana PL, Milan EP, Martinez R, Queiroz-Telles F, Ferreira MS, Alcântara AP, et al. Multicenter Brazilian study of oral Candida species isolated from Aids patients. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:253-7.

5. Van Winkelhoff AJ, Rams TE, Slots J. Systemic antibiotic theraphy in periodontics. Periodontol. 2000;10:45-78.

6. Nascimento GGF, Locatelli J, Freitas PC, Silva GL. Antibacterial activity of plant extracts and phytochemicals on antibiotic–resistant bacteria. Braz J Microbiol. 2000;31:247-56.

7. Brandão MGL, Cosenza GP, Moreira RA, Monte-Mor RLM. Medicinal plants and other botanical products from the Brazilian Official Pharmacopoeia. Rev Bras Farmacogn. 2006;16:408-20.

8. Lima IO, Oliveira RAG, Lima EO, Farias NMP, Souza EL. Atividade antifúngica de óleos essenciais sobre espécies de Candida. Rev Bras Farmacogn. 2006;16:197-201.

9. Castilho AR, Murata RM, Pardi V. Produtos naturais em odontologia. Rev Saúde. 2007;1:11-9.

10. Modesto A, Lima KC, Uzeda M. Atividade antimicrobiana de três dentifrícios utilizados na higiene oral de bebês. Rev Ass Paul Cir Dent. 2001;55:43-8.

11. Joly AB. Botânica: introdução à taxonomia vegetal. 11a ed. São Paulo: Companhia Editora Nacional; 1993.

12. Porte A, Godoy RLO. Alecrim (Rosmarinus officinalis L.): Propriedade antimicrobiana e química do óleo essencial. B Ceppa. 2001;2:193-210.

13. Morton J. Jambolan. In: Morton J. Fruits of warm climates. Miami: Creative Resource Systems; 1987. p. 375-8.

14. Prince PSM, Menon VP, Pari L. Hypoglycemic activity of Syzygium cumini seeds: effect on lipid peroxidation in alloxan diabetic rats. J Ethnopharmacol. 1998;61(1): 1-7.

15. Teixeira CC, Fuchs FD, Blotta RM, Knijnik J, Delgado IC, Netto MS, et al. Effect of tea prepared from leaves of Syzygium jambos on glucose tolerance in non-diabetes subjects. Diabetes Care. 1990;13:907-8.

16. Soares JCM, Costa ST, Cecim M. Níveis glicêmicos de colesterol em ratos com Diabetes Mellitus aloxano induzido, tratados com infusão de Bauhinia candicans ou Syzygium jambolanum. Ciênc Rural. 2000;30(1):113-8.

17. Kapoor LD. Handbook of ayuverdic medicinal plants. Boca Raton: CRC; 1990.

18. Araújo JCLV, Lima EO, Ceballos BSO, Freire KRL, Souza EL, Santos-Filho L. Ação antimicrobiana de óleos essenciais sobre microrganismos potencialmente causadores de infecções oportunistas. Rev Patol Trop. 2004;33:55-64.

19. Anibal PC. Potencial de ação antimicrobiana in vitro de extratos de plantas na inibição de Candida spp., Streptococcus mutans e Staphylococcus aureus [dissertação mestrado]. Piracicaba: Faculdade de Odontologia da UNICAMP; 2007.

20. Michelin DC, Moreschi PE, Lima AC, Nascimento GGF, Paganelli MO, Chaud MV. Avaliação da atividade antimicrobiana de extratos vegetais. Rev Bras Farmacogn. 2005;15:316-20.

21. Oliveira GF, Furtado NAJC, Silva-Filho AA, Martins CHG, Bastos JK, Cunha WR, et al. Antimicrobial activity of Syzygium cumini (Myrtaceae) leaves extract. Braz J Microbiol. 2007;38:381-4.

22. Querido SMR. Microrganismos potencialmente superinfectantes na cavidade bucal de indivíduos submetidos a antibioticoterapiA para tratamento de tuberculose pulmonar [tese doutorado]. São José dos Campos: Faculdade de Odontologia da UNESP; 2006.

23. Phongpaichit S, Subhadhirasakul S, Wattanapiromsakul C. Antifungal activities of extracts from Thai medicinal plants against opportunistic fungal pathogens associated with AIDS patients. Mycoses. 2005;48:333-8.

24. Pereira EM, Machado TB, Leal ICR, Jesus DM, Damaso CRA, Pinto AV, et al. Tabebuia avellanedae naphtho quinones: activity against methicillin-resistant staphylococcal strains, cytotoxic activity and in vivo dermal irritability analysis. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2006;5(5):1-7.

25. Volpato AMM. Avaliação do potencial antibacteriano de Calendula officinalis (Asteraceae) para seu emprego como fitoterápico [tese doutorado]. Curitiba: Universidade Federal do Paraná; 2005.

26. Sikkema J, De Bont JA, Poolman B. Mechanisms of membrane toxicity of hydrocarbons. Microbiol Rev. 1995;59:201-22.

27. Loguercio AP, Battistin A, Vargas AC, Henzel A, Witt NM. Atividade antibacteriana de extrato hidro-alcoólico de folhas de jambolão (Syzygium cumini L. Skells). Ciênc Rural. 2005;35:371-6.

28. Scalbert A. Antimicrobial properties of tannins. Phytochemistry. 1991;30:3875-83.

29. Eloff JN. A sensitive and quick microplate method to determine the minimal inhibitory concentration of plant extracts for bacteria. Planta Med. 1998;64:711-3.

30. Carretero-Peláez MA, Esparza-Gómez GC, Figuero-Ruiz E, Cerero-Lapiedra R. Alcohol-containing mouthwashes and oral cancer. Critical analysis of literature. Med Oral. 2004;9:116-23.
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